コンテンツにスキップ

藍藻

この記事は良質な記事に選ばれています
出典: フリー百科事典『ウィキペディア(Wikipedia)』
シアノバクテリアから転送)
シアノバクテリア門
生息年代: Paleoproterozoic–現世[1]

1. (上) 糸状藍藻の1種、(下) クロオコックス属

分類
ドメイン : 細菌 Bacteria
: シアノバクテリア門 Cyanobacteria
学名
Cyanobacteria
Stanier ex Cavalier-Smith, 2002
和名
シアノバクテリア[2]、藍色細菌[2]、ラン細菌[2]、藍藻[3]、ラン藻[4]、藍色植物[3]、藍藻植物[3]
英名
cyanobacteria[5], cyanoprokaryotes[6], blue-green algae[5], cyanophytes[5]
下位分類[注 3]

: blue-green algae[ 4] : cyanobacteria

#

1cyano- κυανός (kyanós) 

2530[9][10][ 5] (anoxygenic photosynthesis) 

: Cyanobacteria2019DNA

[]


[3][5][12][13][14][15]26a
2. 藍藻におけるおける体制の多様性: a, b Chroococcus, c Cyanothece, d Snowella, e Microcystis, f Pleurocapsa, g Planktothrix, h Limnothrix, i Arthrospira, j Johanseninema, k Phormidium, l, m Oscillatoria, n Schizothrix, o Tolypothrix, p Katagnymene, q, r Dolichospermum, s Nostoc, t Nodularia, u, v Stigonema. スケールバー: a–u = 10 µm, v = 20 µm.
  • 単細胞性 (unicellular)
    体が1個の細胞からなる (下図3)。細胞の形は球状や桿状のものが多く(例: Synechococcus, Synechocystis)、また異極性(heteropolarity; 基端と先端で形態が異なる)を示す種もいる(例: Chamaesiphon; 下図16a)[14]
3a. 単細胞性 (Synechococcus)
3b. 単細胞性

 (colonial)
4[14]palmelloid colony; Aphanocapsasarcinoid colony; Cyanosarcinadendroid colony[14]
4a. 群体性 (Merismopedia)
4b. 群体性 (Gomphosphaeria)
4c. 群体性 (Aphanothece)
  • 糸状性 (filamentous)
    5a. 無分枝糸状
    5b. 真分枝糸状 (Fischerella)
    5c. 無分枝糸状
    5d. 無分枝糸状 (異極性)
    5e. 偽分枝糸状
    5f. 真分枝糸状
    5g. 多列真分枝糸状
6a. ネンジュモ属の1種の藻体
6b. ネンジュモ属では、共通の粘液質中に多数のトリコームがある。
7. 真分枝 (左) と偽分枝 (右)

 (5) trichome1 (filament) [15]: 6 (uniseriate)  (multiseriate) :  Stigonema5g (1g) calyptra5d (Rivularia) [16] () (unbranching) 5a, c, d[15] (false branching)  ()5e, 7 (true branching) 25b, f, g, 7 (heterotrichous) : Fischerella[17][18]

[]


1 (µm)  100 µm [14]

[]


 ()  (peptideglycan layer)  (outer membrane) [19] murein12700 (nm) (periplasm)  lipopolysaccharide, LPS[20]

[17]septosome septal junction microplasmodesmata[17][21][22] 25 nm 15 nm 6 nm[23]

S (surface layer, S-layer) [24][25][26]
8a. 共通の粘液質に包まれた藍藻
8b. 鞘をもつ糸状藍藻
8c. 色素で色づいた鞘をもつ糸状藍藻

 (exopolysaccharide)  (extracellular polymeric substance, EPS) [19][27][28]sheath; ; 8b, c (capsule; )slime; 沿; 8a[29][30][28][31][32][33] (scytonemin)[34] (gloeocapsin)[35] (mycosporine-like amino acid, MAA)[36][37][38]

[]


DNA9[39][40]9a, 11a9b[41] (Gloeobacter) [42] (Prochloron) [43] (thylakoid center) [44][45][46] (chromoplasm) (centroplasm) [47]DNA9a (nucleoplasm) DNA[43]
9a. 藍藻の細胞内模式図: 同心円状に配列したチラコイド表面にはフィコビリソームが付着しており、また細胞中央の繊維はDNA。
9b. プロクロロコックス属の透過型電子顕微鏡像 (着色): チラコイドが同心円状に配置しており、中央にカルボキシソームがある (濃色部)。
9c. 藍藻細胞の細胞内構造: 青色は細胞膜外膜、オレンジ色はチラコイド、水色はグリコーゲン、緑色 (C) はカルボキシソーム、ピンク色 (G) はおそらくポリリン酸

 (carboxysome, polyhedral body) 200700 nm [48][49]9b, c[48][50][51][52]

α-1,6[53][54]α- (cyanophycean starch) 10a cyanophycin granule[55]10b[56]polyphosphate body; ; 9c, 10c[57]β-[57] [58]10c
10a. シアノフィシン
10b. ドリコスペルマム属 (Dolichospermum): 細胞中の黒い部分はエアロトープ (ガス胞の集合)、中央右上の異質細胞両端にシアノフィシン顆粒がある。
10c. 藍藻細胞の元素マッピング像: 赤はカルシウム (炭酸カルシウム)、緑はリン (ポリリン酸)

 (gas vesicle) [14][59][60]"" (aerotope, gas vacuole) 10b, 12[61][62]

[]


2III[63]III2

I使[64][65][66]Synechocystis sp. PCC 6803 DNAII (UCYN-A, unicellular cyanobacteria group A) [67][68][69]: 

 a a bd f[70][71][72] d f b (Prochlorococcus)  a a a[73][74] (Acaryochloris)  a d[75]
Schematic of a hemi-discoidal phycobilisome.
11a. フィコビリソームの模式図: 中央にアロフィコシアニンが位置し、そこからフィコシアニン (青)、フィコエリスリン (赤) からなるロッドが伸びている。
The photograph shows a series of cultures of different strains of cyanobacteria from the genera Prochlorococcus and Synechococcus. The different strains show a wide range of coloration, indicating their differing combinations of pigments for photosynthesis.
11b. さまざまな色のピコプランクトン性藍藻: 左から2, 3番目がプロクロロコックス属 (原核緑藻)、残りはシネココックス属であり、この色の違いは主にフィコビリンの有無や種類、量比による。

[76][77]11a2, 11b[78]11b
[79]complementary chromatic acclimation[ 6] [81][82]

β-α-[83]

1,5-/2 Form IB  β-Form IB  β- [48] Form IA  α-Form IA  α- [48]

[84]TCA[85]

[]


 (N2)  (nitrogen fixation) [86][87][88]1
12.  ():  ()  ()  () 

[89][90] (Trichodesmium)  (diazocyte) [91][92]heterocyte,  heterocyst[ 7][17][94][95]10b, 12 polar nodule10b, 12ATP

[]

13. Synechocystis sp. PCC 6803

DNADNADNADNA[96] Synechocystis sp. PCC 6803 4[97] 1.7 - 9 MbpMbp = 100 15 Mbp [98]1,7007,000

[99]Synechocystis sp. PCC 680313Thermosynechococcus elongatusSynechococcus elongatus PCC 6301Cyanothece sp. ATCC 51142Anabaena sp. PCC7120Nostoc punctiforme PCC, ATCC 

[]

14. 

S[31][100][101] (gliding movement) 14 (Oscillatoria) 姿oscillatio = S[19]

 (cyanobacteriochrome) [79][102][103]

生殖[編集]

15a. 二分裂中のプロクロロコックス属 (透過型電子顕微鏡像)
15b. シアノファージ (透過型電子顕微鏡像)
16a. 外生胞子形成
16b. 内生胞子形成
16c. アキネート (s)

15aexospore,  exocyte; 16aendospore,  baeocyte; 16b[14][15]

 (separation disc, necridium) ; hormogonium, pl. hormogonia[104][105]

 (akinete) [106]16cII[107]

DNA cyanophage 15bDNA[108]

[]


[14][109][110]10[111]pH[112][113][114][115]

沿 2 µm  Synechococcus  Prochlorococcus[ 8] [117][118][119]17a, b 200 m [108] 7.0 × 1026  2.9 × 1027  12 Gt /25.2%[120] (Trichodesmium) [92]17c, d
Photosynthetic picoplankton from the Pacific Ocean (off the Marquesas islands observed by epifluorescence microscopy (blue exciting light). Orange fluorescing dots correspond to Synechocococus cyanobacteria, red fluorescing dots to picoeukaryotes. Larger cells (e.g. diatom, upper right) can also be seen.
17a. 南太平洋マルキーズ諸島沖サンプルの蛍光顕微鏡像: 黄色はピコプランクトン性藍藻、赤は真核藻類の葉緑体。
Vertical distribution of the photosynthetic picoplankton populations determined by flow cytometry in the tropical Pacific (OLIPAC cruise, 1994).
17b. 熱帯太平洋におけるピコプランクトンの深度分布: 赤 = プロクロロコックス属、緑 = シネココックス属、茶 = 真核ピコプランクトン
Bacterial bloom south of Fiji on October 18, 2010. Though it is impossible to identify the species from space, it is likely that the yellow-green filaments are miles-long colonies of Trichodesmium, a form of cyanobacteria often found in tropical waters.
17c. おそらくアイアカシオ属の赤潮 (緑色の部分) の衛星写真 (フィジー付近)
Trichodesmium bloom off Great Barrier Reef.
17d. 大発生したアイアカシオ属 (グレートバリアリーフ)
[121] (Microcystis) (Dorychospermum)[ 9] (Aphanizomenon) (Planktothrix) [123]18ac[124][125][126]Planktothrix rubescens, 18d[127]
アオコが大発生して、湖水が黄緑色に染まった津久井湖
18a. アオコが発生した津久井湖 (9月)
Bloom of cyanobacteria in a freshwater pond. This accumulation in one corner of the pond was caused by wind drift. It looked as if someone had dumped a bucket color into the water.
18b. 水面にマットを形成しているアオコ (ドイツ、7月)
アオコを形成するミクロキスティス属 (Microcystis)
18c. アオコを形成するミクロキスティス属 (Microcystis)
Nature reserve "Allgäuer Hochalpen" (NSG 00400.01): At an altitude of about 1800 m, the Schneck is behind the photographer. The valley in front belongs to the Stierbach in the upper Bärgündele valley. In the background the arêtes and summits of Kreuzkopf and Wiedemer Kopf can be seen. The little pond is reddish brown due to an algal bloom, caused by Planktothrix rubescens. That species of cyanobacteria prefers clear, standing water, which is poor in nutrients.
18d. 中央の池はP. rubescensの大増殖によって茶色く染まっている (ドイツ、7月)。

[128]19ac沿 (stromatolite) [38]19d (thrombolite) (oncolite) [129][130]
Red_cyanobacteria_on_dead_gorgonian
19a. 海底のウミトサカ上についた赤い藍藻 (紅海)
Cyanobacterial mat at Shelenyat Reef, Red Sea, Egypt.
19b. 海底の藍藻マット (紅海)
Modern cyanobacterial-algal mat, salty lake on the White Sea seaside.
19c. 北極海塩湖岸の藍藻マット
Stromatolites growing in Hamelin Pool Marine Nature Reserve, Shark Bay in Western Australia.
19d. ストロマトライト (オーストラリア、シャーク湾)

20a, b100[131] (soil crust) 20b[109][110][132]
イシクラゲ
20a. 地表に生育するイシクラゲ (Nostoc commune)
Biological soil crust, Saguaro National Park (RMD), Arizona.
20b. 藍藻を含む土壌クラスト (米国アリゾナ州)
The orange and brown color at the edge are due to the cyanobacteria Phormidium, Synechococcus, and Calothrix.
20c. 水温に対応して帯状分布している複数種の好熱性藍藻 (イエローストーン国立公園)
A crevasse created by water drilling a hole tens of meters deep into the glacier ice. Our skidoo guide inspects the crack. Langjökull glacier. July 2006.
20d. 氷河上の藍藻 (黒色の部分) (アイスランド)

[109][110]20c70 60 [113][128][133]20d (cryoconite) 調[134]

[]


[135][136][137][138][139][140] (cyanobiont) 

 8%  (cyanolichen) [137][141]21aGeosiphon;  (Nostoc punctiforme) [137][142][143][144]21b宿宿綿[145][146][147]21c[148][149][150][148][149][148][149][151][152]21d (Prochloron) 宿
21a. 藍藻を共生者とする地衣類であるイワノリ科の1種 (子嚢菌門)
21b. 藍藻 (No) が細胞内共生しているゲオシフォン (グロムス亜門)
21c. プロクロロンが共生しているチャツボボヤ (ホヤ綱)
21d. 藍藻 (上部に集積している赤褐色の顆粒) を共生させたオルニトケルクス属 (渦鞭毛藻綱)

宿[9][153]Paulinella spp.;   chromatophore 宿[154]
宿[136][155][156]; 22a[156]22b[157][158]; 22c[159]22d[160][161][100][136]宿宿[136][158] BMAA (β-methylamino-L-alanine) [162]
22a. ウスバゼニゴケ (苔類) の葉状体には藍藻が共生している (暗色部)。
22b. ニワツノゴケ (ツノゴケ類) の葉状体には藍藻が共生している。
22c. ニシノオオアカウキクサ (薄嚢シダ類) の葉には藍藻が共生している。
22d. ソテツ属のサンゴ状根 (内部に藍藻が共生)
22e. この Guinardia (珪藻) の細胞内には藍藻の Richelia が共生している (両端に2個体ずつ見える)。

[163][138][164][165][166][167][168][169]22e (spheroid body) [170]Braarudosphaera (UCYN-A) 宿[67]
23.  ()  (Coccomyxa)  () 

[171][172]23 () 

[141][173][174][175][176][177][178][179][180][181][135][135][182]

[]

[]


24a; [123][183]2-24b

 cyanotoxin[184][185][186][187][188]24c24d24eB12B12[189][190]

[191][192]調

[]


 "" Spirulina  Arthrospira [193][194]25a (25b, c[193][195]25d[193]
25a. "スピルリナ"の大規模培養 (フランス)
25b. スピルリナのタブレット
25c. スピルリナ製品の顕微鏡像
25d. スピルリナの色素を利用したアイスキャンディー
25e. 髪菜

Nostoc flagelliforme, [196]25e2000 (Nostoc sphaeroides)  (Nostoc commune) [197] (Nostoc verrucosum)  (Aphanothece sacrum, ) [198]

[]


 (Anabaena azollae)  ()[199]

[200][201][202][29][203]

[204][205][206][204][207][208]

NASA[209]

[]


 (Terrabacteria) [210][211]1[212][213][214][213][215]

III[216]22[217][218][219]
26. 2223 ()

biomarker24Great Oxygenation Event, GOE[220]GOEGOE[221][222][220]GOE[215]GOE[223][224][1][225](11a)[226][1][227]

[9][228][229]15宿[9][153][230]2[231] (primary endosymbiosis) 1 (Gloeomargarita) [232]

[]


""Cyanophyta) (Cyanophyceae[233][234]""[12][3][5][9][235][236]  [ 10] (Myxophyceae)  (Myxophta) (Schizophyceae) 使[3][237]

: Cyanobacteria"" (Melainabacteria) "" (Sericytochromatia)  (Oxyphotobacteria)[ 2] [212][213][7]

 [238]

 b (Prochlorophyta) [239] (prochlorophytes)

[47][240][241]1便 (Bergeys Manual) 2[112]
表1. 古典的な藍藻の分類体系の一例[13][112]
バージェイ細菌分類便覧 第2版 での分類 特徴 代表属
クロオコックス目 (Chroococcales)[注 11] subsection I 単細胞または群体性 Synechococcus, Synechocystis, Chroococcus, Aphanocapsa, Coelosphaerium, Merismopedia, Microcystis
プレウロカプサ目 (Pleurocapsales) subsection II 単細胞または群体性、内生胞子 (ベオサイト) 形成 Pleurocapsa, Chroococcidiopsis, Xenococcus
ユレモ目 (Oscillatoriales) subsection III 糸状性、異質細胞を欠く Oscillatoria, Phormidium, Lyngbya, Arthrospira, Planktothrix, Pseudanabaena
ネンジュモ目 (Nostocales) subsection IV 糸状性 (真分枝なし)、異質細胞あり Anabaena, Nostoc, Aphanizomenon, Cylindrospermum, Calothrix, Scytonema
スチゴネマ目 (Stigonematales) subsection V 糸状性 (真分枝あり)、異質細胞あり Stigonema, Hapalosiphon, Fischerella

しかし分子系統学的研究の結果、上記の分類群の多くは多系統群であることが判明しており、特に単細胞性と糸状性の間では頻繁な平行進化(特に糸状体から単細胞体への進化)が起こったと考えられている[242][241]。2019年現在までに報告されている分子系統解析の結果に基づくシアノバクテリア門内の系統仮説の1つを下に示す。

シアノバクテリア門

"セリキトクロマチア綱"[注 1]

"メライナバクテリア"[注 1]

オキシフォトバクテリア綱

グロエオバクター目 (Gloeobacter)

クレード G (Octopus Spring clade) (e.g. "Synechococcus" PCC7336, JA-3-3Ab)

●■クレード F (e.g. Pseudanabaena, "Synechococcus" PCC7502)

グロエオマルガリータ目 (Gloeomargarita)

葉緑体 (色素体)

クレード E (AcTh) (e.g. Acaryochloris, Thermosynechococcus)

●■Prochlorothrix クレード (e.g. Nodosilinea, Lagosinema, Prochlorothrix)

クレード C1 (SynPro) (e.g. Prochlorococcus, "Synechococcus" WH8102)

クレード C2 (Synechococcus s.s.) (Synechococcus elongatus)

●■クレード C3 (LPP-B) (e.g. "Synechococcus" PCC7335, "Phormidium" NIES-30)

クレード D (e.g. "Geitlerinema" PCC 7407, Leptolyngbya PCC 6306)

Geitlerinema PCC 7105 クレード

クレード A (Osc) (e.g. Trichodesmium, Arthrospira, Planktothrix)

●▲■クレード B2 (SPM) (e.g. Pleurocapsa, Microcystis, "Synechocystis" PCC 6803)

Moorea クレード

●■クレード B3 (e.g. Crinalium PCC 9333, Chamaesiphon PCC 6605)

●▲クロオコッキディオプシス目 (e.g. Chroococcidiopsis, "Synechocystis" PCC 7509)

ネンジュモ目

27. 藍藻の系統仮説の一例 (基本的にゲノム塩基配列情報が明らかなもののみ): いくつかの系統解析結果に基づく[232][40][243][244][116][245][213]. = 単細胞・群体 (旧クロオコックス目)、 = 単細胞・群体、内生胞子あり (旧プレウロカプサ目)、 = 糸状性 (旧ユレモ目)、 = 糸状・異質細胞あり (旧ネンジュモ目・スチゴネマ目).


2019[14]2019Komárek et al. (2014) 2[246][247][248] (SynechococcusSynechocystisLyngbya )[249][116][250]
表2. Komárek et al. (2014) による藍藻の分類体系[246][251][252][252] (その後に報告されたグロエオマルガリータ目を付加)
  • グロエオバクター目 Gloeobacterales Cavalier-Smith, 2002
    単細胞性。チラコイドを欠く (光化学系細胞膜に存在する)。藍藻の中で最も初期に分かれたものであることが示されている。グロエオバクター綱 (Gloeobacteria) として他の藍藻と分けられることがある[253]
    代表属: グロエオバクター属 (Gloeobacter)
  • グロエオマルガリータ目 Gloeomargaritales D.Moreira et al., 2017
    単細胞性。細胞内に炭酸塩の顆粒を含む。アルカリ湖沼に生育。真核生物色素体 (葉緑体) に最も近縁な藍藻であることが示唆されている[232]。シネココックス目に含めることもある[248]
    代表属: グロエオマルガリータ属 (Gloeomargarita)
  • シネココックス目 Synechococcales L.Hoffmann, J.Komárek & J.Kastovsky, 2005
    単細胞、群体または糸状性 (細いものが多い)。チラコイドは細胞膜に沿って同心円状に配置する。おそらく非単系統群であるが、藍藻の中で初期に分岐したものが多い。糸状性のものをプセウドアナベナ目 (Pseudanabaenales) として分けることがある[241][6]
    代表属: シネココックス属 (Synechococcus)、シアノビウム属 (Cyanobium)、プロクロロコックス属 (Prochlorococcus)、アカリオクロリス属 (Acaryochloris)、シネコキスティス属 (Synechocystis)、メリスモペディア属 (Merismopedia)、コエロスファエリム属 (Coelosphaerium)、カマエシフォン属 (Chamaesiphon)、プセウドアナベナ属 (Pseudanabaena)、プロクロロトリックス属 (Prochlorothrix)、リムノスリックス属 (Limnothrix)、レプトリングビア属 (Leptolyngbya)
  • ユレモ目 Oscillatoriales Schaffner, 1922
    糸状性で比較的太いものが多い。単細胞性の種も含まれる。チラコイドは放射状または不規則に配置する。おそらく非単系統群。
    代表属: シアノテーセ属 (Cyanothece)、ユレモ属 (Oscillatoria)、フォルミディウム属 (Phormidium)、プランクトスリックス属 (Planktothrix)、アルスロスピラ属 (Arthrospira)、リングビア属 (Lyngbya)、ミクロコレウス属 (Microcoleus)、アイアカシオ属 (Trichodesmium)
  • スピルリナ目 Spirulinales J.Komárek, J.Kastovsky, J.Mares & J.R.Johansen, 2014
    糸状性。同心円状のチラコイド配置をもつことからシネココックス目に分類されていたが、同目の他の種とは系統的に離れているため独立の目とされた[246]
    代表属: スピルリナ属 (Spirulina)[注 12]、ハロスピルリナ属 (Halospirulina)
  • クロオコックス目 Chroococcales Schaffner, 1922
    単細胞または群体性。チラコイドは同心円状ではなく、多少とも不規則に配置。おそらく非単系統群。
    代表属: クロオコックス属 (Chroococcus)、シアノバクテリウム属 (Cyanobacterium)、ミクロキスティス属 (Microcystis)、クロログロエ属 (Chlorogloea)、ゴンフォスファエリア属 (Gomphosphaeria)、グロエオカプサ属 (Gloeocapsa)
  • プレウロカプサ目 Pleurocapsales Geitler, 1925
    単細胞または群体性。内生胞子 (ベオサイト) 形成を行う。チラコイドの配置は不規則。1つの系統群を形成するものが多いが、一部は系統的に離れており非単系統群。
    代表属: シアノキスティス属 (Cyanocystis)、ヒエラ属 (Hyella)、クセノコックス属 (Xenococcus)、プレウロカプサ属 (Pleurocapsa)
  • クロオコッキディオプシス目 Chroococcidiopsidales J.Komárek, J.Kastovsky, J.Mares & J.R.Johansen, 2014
    単細胞または群体性。内生胞子 (ベオサイト) 形成を行う。チラコイドの配置は不規則。プレウロカプサ目に分類されていたが、分子系統解析からネンジュモ目の姉妹群であることが示唆されている。
    代表属: クロオコッキディオプシス属 (Chroococcidiopsis)、アリテレラ属 (Aliterella)
  • ネンジュモ目 Nostocales Borzì, 1914
    糸状性 (無分枝、分枝)。異質細胞やアキネートを形成する。藍藻の中で明瞭な単系統群を形成する。伝統的に、真分枝するものはスチゴネマ目として分けられていたが、系統的にはネンジュモ目の中に含まれることが示されている。
    代表属: ネンジュモ属 (Nostoc)、アナベナ属 (Anabaena)、ドリコスペルマム属 (Dolichospermum)、アファニゾメノン属 (Aphanizomenon)、シリンドロスペルマム属 (Cylindrospermum)、トリポスリックス属 (Tolypothrix)、ミクロカエテ属 (Microchaete)、カロスリックス属 (Calothrix)、スキトネマ属 (Scytonema)、ハパロシフォン属 (Hapalosiphon)、スチゴネマ属 (Stigonema)

ギャラリー[編集]

脚注[編集]

注釈[編集]



(一)^ abcd[7]

(二)^ ab (Cyanophyceae)[8]

(三)^  ()

(四)^ 2019 ()24820198_86-8_87doi:10.5363/tits.24.8_86ISSN 1342-3363NAID 130007769442 

(五)^ [11]

(六)^  (chromatic adaptation) [5][80]

(七)^  (heterocyst)  () [93]

(八)^ [116]2019

(九)^  (Anabaena) [122]

(十)^ 2019 (Cyanophyceae) [8]

(11)^  ()  (Chamaesiphonales) [12]

(12)^  Arthrospira [193] ()

出典[編集]



(一)^ abc, 12252013791-806doi:10.5026/jgeography.122.791ISSN 0022-135XNAID 130003385928 

(二)^ abc, ,  &  () (2013). .   5. . pp. 14451446. ISBN 978-4000803144 

(三)^ abcdef (1999). . In .  (3) . . pp. 160165. ISBN 978-4785358266 

(四)^ "".  . 2021925

(五)^ abcdefGraham, J.E., Wilcox, L.W. & Graham, L.E. (2008). Cyanobacteria. Algae. Benjamin Cummings. pp. 94121. ISBN 978-0321559654 

(六)^ abBüdel, B., & Kauff, F. (2012). Prokaryotic Algae, Bluegreen Algae. In Frey, W. (eds.). Syllabus of Plant Families. A. Engler's Syllabus der Pflanzenfamilien Part 1/1. Borntraeger. pp. 5-40. ISBN 978-3-443-01061-4 

(七)^ abGarciaPichel, F., Zehr, J. P., Bhattacharya, D. & Pakrasi, H. B. (2019). What's in a name? The case of cyanobacteria. Journal of Phycology. doi:10.1111/jpy.12934. 

(八)^ abCyanophyceae. Algaebase. 2021923

(九)^ abcde (2006). 30 --. . ISBN 4486017773. NCID BA75032272 

(十)^ . Web.   (2020512). 20221111

(11)^ 6720093-7 

(12)^ abc (1997). . . . pp. 2739. ISBN 978-4753640607 

(13)^ abvan den Hoek, C., Mann, D., Jahns, H. M. & Jahns, M. (1995). Algae: an introduction to phycology. Cambridge University Press. ISBN 978-0521316873 

(14)^ abcdefghiKomárek, J. (2003). Coccoid and colonial cyanobacteria. In Wehr, J.D. & Sheath, R.G.. Freshwater Algae of North America. Ecology and Classification. Boston, MA: Academic Press. pp. 59-116. ISBN 978-0127415505 

(15)^ abcdKomárek, J., Kling, H. & Komárková, J. (2003). Filamentous cyanobacteria. In Wehr, J.D. & Sheath, R.G.. Freshwater Algae of North America. Ecology and Classification. Boston, MA: Academic Press. pp. 117-196. ISBN 978-0127415505 

(16)^ Mahasneh, I.A., Grainger, S.L.J. & Whitton, B.A. (1990). Influence of salinity on hair formation and phosphatase-activities of the blue-green-alga (cyanobacterium) Calothrix viguieri D253. Br. Phycol. J. 25: 25-32. doi:10.1080/00071619000650021. 

(17)^ abcdFlores, E. & Herrero, A. (2010). Compartmentalized function through cell differentiation in filamentous cyanobacteria. Nature Reviews Microbiology 8: 39-50. doi:10.1038/nrmicro2242. 

(18)^ Singh, S.P. & Montgomery, B.L. (2011). Determining cell shape: adaptive regulation of cyanobacterial cellular differentiation and morphology. Trends in Microbiology 19: 278-285. doi:10.1016/j.tim.2011.03.001. 

(19)^ abcHoiczyk, E. & Hansel, A. (2000). Cyanobacterial cell walls: News from an unusual prokaryotic envelope. J. Bacteriol. 182: 1191-1199. doi:10.1128/JB.182.5.1191-1199.2000. 

(20)^ Stewart, I., Schluter, P.J. & Shaw, G.R. (2006). Cyanobacterial lipopolysaccharides and human health - a review. Environ Health 5: 7. doi:10.1186/1476-069X-5-7. 

(21)^ Flores, E., Herrero, A., Forchhammer, K. & Maldener, I. (2016). Septal junctions in filamentous heterocyst-forming Cyanobacteria. Trends in Microbiology 24: 79-82. doi:10.1016/j.tim.2015.11.011. 

(22)^ Bornikoel, J., Carrión, A., Fan, Q., Flores, E., Forchhammer, K., Mariscal, V., ... & Maldener, I. (2017). Role of two cell wall amidases in septal junction and nanopore formation in the multicellular cyanobacterium Anabaena sp. PCC 7120. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology 7: 386. doi:10.3389/fcimb.2017.00386. 

(23)^ Mullineaux, C. W., Mariscal, V., Nenninger, A., Khanum, H., Herrero, A., Flores, E. & Adams, D. (2008). Mechanism of intercellular molecular exchange in heterocyst-forming cyanobacteria. EMBO J. 27: 1299-1308. doi:10.1038/emboj.2008.66. 

(24)^ Šmarda, J., Šmajs, D., Komrska, J. & Krzyžánek, V. (2002). S-layers on cell walls of cyanobacteria. Micron 33: 257-277. doi:10.1016/S0968-4328(01)00031-2. 

(25)^ Ehlers, K. & Oster, G. (2012). On the mysterious propulsion of Synechococcus. PLoS One 7: e36081. doi:10.1371/journal.pone.0036081. 

(26)^ Strom, S. L., Brahamsha, B., Fredrickson, K. A., Apple, J. K. & Rodríguez, A. G. (2012). A giant cell surface protein in Synechococcus WH8102 inhibits feeding by a dinoflagellate predator. Environmental Microbiology 14: 807-816. doi:10.1111/j.1462-2920.2011.02640.x. 

(27)^ Pereira, S., Zille, A., Micheletti, E., Moradas-Ferreira, P., De Philippis, R. & Tamagnini, P. (2009). Complexity of cyanobacterial exopolysaccharides: composition, structures, inducing factors and putative genes involved in their biosynthesis and assembly. FEMS Microbiology Reviews 33: 917-941. doi:10.1111/j.1574-6976.2009.00183.x. 

(28)^ abPlude, J.L., Parker, D.L., Schommer, O.J., Timmerman, R.J., Hagstrom, S.A., Joers, J.M. & Hnasko, R. (1991). Chemical characterization of polysaccharide from the slime layer of the cyanobacterium Microcystis flos-aquae C3-40. Appl. Environ. Microbiol. 57: 1696-1700. https://doi.org/10.1128/aem.57.6.1696-1700.1991. 

(29)^ abDe Philippis, R. & Vincenzini, M. (1998). Exocellular polysaccharides from cyanobacteria and their possible applications. FEMS Microbiology Reviews 22: 151-175. doi:10.1111/j.1574-6976.1998.tb00365.x. 

(30)^ De Philippis, R. & Vincenzini, M. (2003). Outermost polysaccharidic investments of cyanobacteria: nature, significance and possible applications. Recent Res. Dev. Microbiol. 7: 13-22. 

(31)^ abMcCarren, J. & Brahamsha, B. (2009). Swimming motility mutants of marine Synechococcus affected in production and localization of the S-layer protein SwmA. J. Bacteriol. 191: 1111-1114. doi:10.1128/JB.01401-08. 

(32)^ Reynolds, C. S. (2007). Variability in the provision and function of mucilage in phytoplankton: facultative responses to the environment. Hydrobiologia 578: 37-45. doi:10.1007/s10750-006-0431-6. 

(33)^ Sinha, R. P. & Häder D.-P. (2008). UV-protectants in cyanobacteria. Plant Science 174: 278-289. doi:10.1016/j.plantsci.2007.12.004. 

(34)^ Ehling-Schulz, M., Bilger, W. & Scherer, S. (1997). UV-B-induced synthesis of photoprotective pigments and extracellular polysaccharides in the terrestrial cyanobacterium Nostoc commune. J. Bacteriol. 179: 1940-1945. doi:10.1128/jb.179.6.1940-1945.1997. 

(35)^ Storme, J. Y., Golubic, S., Wilmotte, A., Kleinteich, J., Velázquez, D. & Javaux, E. J. (2015). Raman characterization of the UV-protective pigment gloeocapsin and its role in the survival of cyanobacteria. Astrobiology 15: 843-857. doi:10.1089/ast.2015.1292. 

(36)^ Böhm, G. A., Pfleiderer, W., Böger, P. & Scherer, S. (1995). Structure of a novel oligosaccharide-mycosporine-amino acid ultraviolet A/B sunscreen pigment from the terrestrial cyanobacterium Nostoc commune. J. Biol. Chem. 270: 8536-8539. doi:10.1074/jbc.270.15.8536. 

(37)^ Jansson, C. & Northen, T. (2010). Calcifying cyanobacteria-the potential of biomineralization for carbon capture and storage. Current Opinion in Biotechnology 21: 365-371. doi:10.1016/j.copbio.2010.03.017. 

(38)^ abReid, R. P., Visscher, P. T., Decho, A. W., Stolz, J. F., Bebout, B. M., Dupraz, C., Macintyre, I. G., Paerl, H. W., Pinckney, J. L., Prufert-Bebout, L., Steppe, T. F. & DesMarais, D. J. (2000). The role of microbes in accretion, lamination and early lithification of modern marine stromatolites. Nature 406: 989-992. doi:10.1038/35023158. 

(39)^ Komárek, J. & Čáslavská, J. (1991). Thylakoidal patterns in oscillatorialean genera. Archiv für Hydrobiologie/Algological Studies 64: 267-270. 

(40)^ abMareš, J., Strunecky, O., Bucinska, L. & Wiedermannova, J. (2019) Evolutionary patterns of thylakoid architecture in cyanobacteria. Frontiers in Microbiology 10: 277. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00277

(41)^ Nagarajan, A. & Pakrasi, H. B. (2001). Membranebound protein complexes for photosynthesis and respiration in cyanobacteria. eLS: 18. doi:10.1002/9780470015902.a0001670.pub2. 

(42)^ Rippka, R. (1974). A cyanobacterium which lacks thylakoids. Archiv für Mikrobiologie 100: 419-436. doi:10.1007/BF00446333. 

(43)^ abCox, G. (1993). Prochlorophyceae. In Berner, T.. Ultrastructure of Microalgae. CRC Press. pp. 53-70. ISBN 9780849363238 

(44)^ Hahn, A. & Schleiff, E. (2014). The Cell Envelope. In Flores, E.. Cell Biology of Cyanobacteria. Caister Academic Press. pp. 29-88. ISBN 978-1-908230-92-8 

(45)^ Nickelsen, J. & Zerges, W. (2013). Thylakoid biogenesis has joined the new era of bacterial cell biology. Frontiers in Plant Science 4: 458. doi:10.3389/fpls.2013.00458. 

(46)^ Rast, A., Heinz, S. & Nickelsen, J. (2015). Biogenesis of thylakoid membranes. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Bioenergetic 1847: 821-830. doi:10.1016/j.bbabio.2015.01.007. 

(47)^ abGeitler, L. (1932). Cyanophyceae. In Rabenhorst, L.. Kryptogamen-Flora. 14. Band. Akademische Verlagsgesellschaft. pp. 1196 

(48)^ abcdPrice, G. D., Badger, M. R., Woodger, F. J. & Long, B. M. (2008). Advances in understanding the cyanobacterial CO2-concentrating-mechanism (CCM): functional components, Ci transporters, diversity, genetic regulation and prospects for engineering into plants. Journal of Experimental Botany 59: 1441-1461. doi:10.1093/jxb/erm112. 

(49)^ Yeates, T. O., Kerfeld, C. A., Heinhorst, S., Cannon, G. C. & Shively, J. M. (2008). Protein-based organelles in bacteria: carboxysomes and related microcompartments. Nature Reviews Microbiology 6: 681-691. doi:10.1038/nrmicro1913. 

(50)^ Colman, B. (1989). Photosynthetic carbon assimilation and the suppression of photorespiration in the cyanobacteria. Aquat. Bot. 34: 211-231. doi:10.1016/0304-3770(89)90057-0. 

(51)^ Bauwe, H., Hagemann, M. & Fernie, A. R. (2010). Photorespiration: players, partners and origin. Trends in Plant Science 15: 330-336. doi:10.1016/j.tplants.2010.03.006. 

(52)^ Codd, G.A. & Marsden, W.J.N. (1984). The carboxysomes (polyhedral bodies) of autotrophic prokarygtes. Biological Reviews 59: 389-422. doi:10.1111/j.1469-185X.1984.tb00710.x. 

(53)^ Deschamps, P., Colleoni, C., Nakamura, Y., Suzuki, E., Putaux, J. L., Buléon, A., ... & Moreira, D. (2008). Metabolic symbiosis and the birth of the plant kingdom. Molecular Biology and Evolution 25: 536-548. doi:10.1093/molbev/msm280. 

(54)^ Nakamura, Y., Takahashi, J. I., Sakurai, A., Inaba, Y., Suzuki, E., Nihei, S., ... & Kawachi, M. (2005). Some cyanobacteria synthesize semi-amylopectin type α-polyglucans instead of glycogen. Plant Cell Physiol. 46: 539-545. doi:10.1093/pcp/pci045. 

(55)^ Berg, H., Ziegler, K., Piotukh, K., Baier, K., Lockau, W. & VolkmerEngert, R. (2000). Biosynthesis of the cyanobacterial reserve polymer multiLarginylpolyLaspartic acid (cyanophycin). The FEBS Journal 267: 5561-5570. doi:10.1046/j.1432-1327.2000.01622.x. 

(56)^ Allen, M. M. (1984). Cyanobacterial cell inclusions. Annual Reviews in Microbiology 38: 1-25. 

(57)^ abJensen, T. E. (1993). Cyanobacterial ultrastructure. In Berner, T.. Ultrastructure of Microalgae. CRC Press. pp. 7-51. https://books.google.co.jp/books?hl=ja&lr=lang_ja 

(58)^ Moreira, D., Tavera, R., Benzerara, K., Skouri-Panet, F., Couradeau, E., Gérard, E., Fonta, C.L., Novelo, E., Zivanovic, Y. & López-García, P. (2017). Description of Gloeomargarita lithophora gen. nov., sp. nov., a thylakoid-bearing, basal-branching cyanobacterium with intracellular carbonates, and proposal for Gloeomargaritales ord. nov.. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 67: 653-658. doi:10.1099/ijsem.0.001679. 

(59)^ Oliver, R.L. (1994). Floating and sinking in gas-vacuolate cyanobacteria. Journal of Phycology 30: 161-173. doi:10.1111/j.0022-3646.1994.00161.x. 

(60)^ Villareal, T. A. & Carpenter, E. J. (2003). Buoyancy regulation and the potential for vertical migration in the oceanic cyanobacterium Trichodesmium. Microb. Ecol. 45: 1-10. doi:10.1007/s00248-002-1012-5. 

(61)^ Walsby, A.E. (1987). Mechanisms of buoyancy regulation by planktonic cyanobacteria with gas vesicles. In P. Fay & C. Van Baalen. The Cyanobacteria. Elsevier. pp. 377-414 

(62)^ Shukla, H. D. & DasSarma, S. (2004). Complexity of gas vesicle biogenesis in Halobacterium sp. strain NRC-1: identification of five new proteins. Journal of Bacteriology 186: 3182-3186. doi:10.1128/JB.186.10.3182-3186.2004. 

(63)^  (1999). . In .  (3) . . pp. 6894. ISBN 978-4785358266 

(64)^ Cohen, Y., Padan, E. & Shilo, M. (1975). Facultative anoxygenic photosynthesis in the cyanobacterium Oscillatoria limnetica. J. Bacteriol. 123: 855-861. doi:10.1128/jb.123.3.855-861.1975. 

(65)^ Cohen, Y., Jorgensen, B. B., Revsbech, N. P. & Poplawski, R. (1986). Adaptation to hydrogen sulfide of oxygenic and anoxygenic photosynthesis among cyanobacteria. Applied and Environmental Microbiology 51: 398-407. doi:10.1128/aem.51.2.398-407.1986. https://doi.org/10.1128/aem.51.2.398-407.1986. 

(66)^ Rippka, R. (1972). Photoheterotrophy and chemoheterotrophy among unicellular blue-green algae. Archiv für Mikrobiologie 87: 93-98. doi:10.1007/BF00424781. 

(67)^ abZehr, J. P., Bench, S. R., Carter, B. J., Hewson, I., Niazi, F., Shi, T., ... & Affourtit, J. P. (2008). Globally distributed uncultivated oceanic N2-fixing cyanobacteria lack oxygenic photosystem II. Science 322: 1110-1112. doi:10.1126/science.1165340. 

(68)^ Tripp, H.J., Bench, S.R., Turk, K.A., Foster, R.A., Desany, B.A., Niazi, F., Affourtit, J.P. & Zehr, J.P. (2010). Metabolic streamlining in an open-ocean nitrogen-fixing cyanobacterium. Nature 464: 90-94. doi:10.1038/nature08786. 

(69)^ Kristiansen, A. (1964). Sarcinastrum urosporae, a colourless parasitic blue-green alga. Phycologia 4: 19-22. doi:10.2216/i0031-8884-4-1-19.1. https://doi.org/10.2216/i0031-8884-4-1-19.1. 

(70)^ Lewin, R. A. & Withers, N. W. (1975). Extraordinary pigment composition of a prokaryotic alga. Nature 256: 735737. doi:10.1038/256735a0. 

(71)^ Miyashita, H., Adachi, K., Kurano, N., Ikemoto, H., Chihara, M. & Miyachi, S. (1996). Chlorophyll das a major pigment. Nature 383: 402. doi:10.1038/383402a0. 

(72)^ Chen, M., Schliep, M., Willows, R. D., Cai, Z. -L., Neilan, B. A. & Scheer, H. (2010). A red-shifted chlorophyll. Science 329: 1318-1319. doi:10.1126/science.1191127. 

(73)^ Chisholm, S. W., Olson, R. J., Zettler, E. R., Goericke, R., Waterbury, J. B. & Welschmeyer, N. A. (1988). A novel free-living prochlorophyte abundant in the oceanic euphotic zone. Nature 334: 340-343. doi:10.1038/334340a0. 

(74)^ Goericke, R. & Repeta, D. (1992). The pigments of Prochlorococcus marinus: the presence of divinyl chlorophyll a and b in a marine prokaryote. Limnology and Oceanography 37: 425-433. doi:10.4319/lo.1992.37.2.0425. 

(75)^ Hu, Q., Miyashita, H., Iwasaki, I., Kurano, N., Miyachi, S., Iwaki, M. & Itoh, S. (1998). A photosystem I reaction center driven by chlorophyll d in oxygenic photosynthesis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95: 13319-13323. doi:10.1073/pnas.95.22.13319. 

(76)^ Sidler, W. A. (1994). Phycobilisome and phycobiliprotein structures.. In Sidler, W. A., & Bryant, D. A.. The Molecular Biology of Cyanobacteria. Springer, Dordrecht. pp. 139-216. ISBN 0792332229 

(77)^ Singh, N. K., Sonani, R. R., Rastogi, R. P. & Madamwar, D. (2015). The phycobilisomes: an early requisite for efficient photosynthesis in cyanobacteria. EXCLI Journal 14: 268289. doi:10.17179/excli2014-723. 

(78)^ Bryant, D. A. (1982). Phycoerythrocyanin and phycoerythrin: properties and occurrence in cyanobacteria. Microbiology 128: 835-844. doi:10.1099/00221287-128-4-835. 

(79)^ abPLANT MORPHOLOGY291201741-45doi:10.5685/plmorphol.29.41ISSN 0918-9726NAID 130006647120 

(80)^ , ,  &  () (2013). .   5. . p. 1307. ISBN 978-4000803144 

(81)^ Ikeuchi, M. & Ishizuka, T. (2008). Cyanobacteriochromes: a new superfamily of tetrapyrrole-binding photoreceptors in cyanobacteria. Photochemical & Photobiological Sciences 7: 1159-1167. doi:10.1039/B802660M. 

(82)^ . .

(83)^ Takaichi, S. & Mochimaru, M. (2007). Carotenoids and carotenogenesis in cyanobacteria: Unique ketocarotenoids and carotenoid glycosides. Cell Mol. Life Sci. 64: 2607-2619. doi:10.1007/s00018-007-7190-z. 

(84)^ Scherer, S., Almon, H. & Böger, P. (1988). Interaction of photosynthesis, respiration and nitrogen fixation in cyanobacteria. Photosynthesis Research 15: 95-114. doi:10.1007/BF00035255. 

(85)^ Zhang, S. & Bryant, D. A. (2011). The tricarboxylic acid cycle in cyanobacteria. Science 334: 1551-1553. doi:10.1126/science.1210858. 

(86)^ Stewart, W.D.P. (1980). Some aspects of structure and function in N fixing cyanobacteria. Annual Reviews in Microbiology 34: 497-536. doi:10.1146/annurev.mi.34.100180.002433. 

(87)^ Berman-Frank, I., Lundgren, P. & Falkowski, P. (2003). Nitrogen fixation and photosynthetic oxygen evolution in cyanobacteria. Res. Microbiol. 154: 157-164. doi:10.1016/S0923-2508(03)00029-9. 

(88)^ Díez, B., Bergman, B. & El-Shehawy, R. (2008). Marine diazotrophic cyanobacteria: out of the blue. Plant Biotechnol. 25: 221-225. doi:10.5511/plantbiotechnology.25.221. 

(89)^ Rippka, R., Deruelles, J., Waterbury, J. B., Herdman, M. & Stanier, R. Y. (1979). Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria. Microbiology 111: 1-61. doi:10.1099/00221287-111-1-1. 

(90)^ León, C., Kumazawa, S. & Mitsui, A. (1986). Cyclic appearance of aerobic nitrogenase activity during synchronous growth of unicellular cyanobacteria. Current Microbiology 13: 149-153. doi:10.1007/BF01568510. 

(91)^ El-Shehawy, R., Lugomela, C., Ernst, A. & Bergman, B. (2003). Diurnal expression of hetR and diazocyte development in the filamentous non-heterocystous cyanobacterium Trichodesmium erythraeum. Microbiology 149: 1139-1146. doi:10.1099/mic.0.26170-0. 

(92)^ abBergman, B., Sandh, G., Lin, S., Larsson, J. & Carpenter, E. J. (2013). Trichodesmium - a widespread marine cyanobacterium with unusual nitrogen fixation properties. FEMS Microbiology Reviews 37: 286-302. doi:10.1111/j.1574-6976.2012.00352.x. 

(93)^ . .  . 2021925

(94)^ Wolk, C.P., Ernst, A., Elhai, J. (1994). Heterocyst metabolism and development. In Bryant, D.A.. The Molecular Biology of Cyanobacteria. Kluwer Academic Publishers. pp. 769-823. ISBN 0792332229 

(95)^ Kumar, K., Mella-Herrera, R. A. & Golden, J. W. (2010). Cyanobacterial heterocysts. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology 2: a000315. doi:10.1101/cshperspect.a000315. 

(96)^ Marco, G., Lange, C. & Soppa, J. (2011). Ploidy in cyanobacteria. FEMS Microbiology Letters 323: 124-131. doi:10.1111/j.1574-6968.2011.02368.x. 

(97)^ Kaneko, T., Sato, S., Kotani, H., Tanaka, A., Asamizu, E., Nakamura, Y., ... & Kimura, T. (1996). Sequence analysis of the genome of the unicellular cyanobacterium Synechocystis sp. strain PCC6803. II. Sequence determination of the entire genome and assignment of potential protein-coding regions. DNA Research 3: 109-136. doi:10.1093/dnares/3.3.109. 

(98)^ Herdman, M., Janvier, M., Rippka, R. & Stanier, R. Y. (1979). Genome size of Cyanobacteria. Journal of General Microbiology 111: 73-85. doi:10.1099/00221287-111-1-73. 

(99)^  () -- ()6720089-15ISSN 18807593NAID 120001492974 

(100)^ abDuggan, P. S., Gottardello, P. & Adams, D. G. (2007). Molecular analysis of genes involved in pilus biogenesis and plant infection in Nostoc punctiforme. J. Bacteriol. 189: 4547-4551. doi:10.1128/JB.01927-06. 

(101)^ Jarrell, K.F. & McBride, M.J. (2008). The surprisingly diverse ways that prokaryotes move. Nature Reviews Microbiology 6: 466-476. doi:10.1038/nrmicro1900. 

(102)^ Montgomery, B. L. (2007). Sensing the light: photoreceptive systems and signal transduction in cyanobacteria. Molecular Microbiology 64: 16-27. doi:10.1111/j.1365-2958.2007.05622.x. 

(103)^ 5462016403-407doi:10.1271/kagakutoseibutsu.54.403ISSN 0453-073XNAID 130006772575 

(104)^ Anagnostidis, K. & Komárek, J. (1988). Modern approach to the classification system of cyanophytes. 3. Oscillatoriales. Archiv für Hydrobiologie/Algological Studies 50/53: 327-472. 

(105)^ Meeks, J. C. & Elhai, J. (2002). Regulation of cellular differentiation in filamentous cyanobacteria in free-living and plant-associated symbiotic growth states. Microbiology and Molecular Biology Reviews 66: 94-121. doi:10.1128/MMBR.66.1.94-121.2002. 

(106)^ Kaplan-Levy, R. N., Hadas, O., Summers, M. L., Rücker, J., & Sukenik, A. (2010). Akinetes: dormant cells of cyanobacteria. Dormancy and Resistance in Harsh Environments. Springer Berlin Heidelberg. pp. 5-27. ISBN 978-3-642-12421-1. 

(107)^ Zhang, C.-C., Laurent, S., Sakr, S., Peng, L. & Bédu, S. (2006). Heterocyst differentiation and pattern formation in cyanobacteria: a chorus of signals.. Mol. Microbiol. 59: 367-375. doi:10.1111/j.1365-2958.2005.04979.x. 

(108)^ abColeman, M. L., Sullivan, M. B., Martiny, A. C., Steglich, C., Barry, K., DeLong, E. F. & Chisholm, S. W. (2006). Genomic islands and the ecology and evolution of Prochlorococcus. Science 311: 1768-1770. doi:10.1126/science.1122050. 

(109)^ abcWhitton, B.A. & Potts, M. (2000). The Ecology of Cyanobacteria: Their Diversity in Time and Space. Kluwer Academic Pub.. pp. 669. ISBN 0-09-941464-3 

(110)^ abcWhitton, B.A., ed (2012). Ecology of Cyanobacteria II: Their Diversity in Space and Time. Springer Science & Business Media. ISBN 978-94-007-3854-6 

(111)^ Garcia-Pichel, F., Belnap, J., Neuer, S. & Schanz, F. (2003). Estimates of global cyanobacterial biomass and its distribution. Algological Studies 109: 213-227. doi:10.1127/1864-1318/2003/0109-0213. 

(112)^ abcCastenholz, R.W. & Waterbury, J.B. (1989). Oxygenic photosynthetic bacteria. Group I. Cyanobacteria. Bergeys Manual of Systematic Bacteriology 3: 1710-1789. 

(113)^ abQuesada, A. & Vincent, W. F. (2012). Cyanobacteria in the cryosphere: snow, ice and extreme cold. Ecology of Cyanobacteria II. Springer Net.. pp. 387-399. ISBN 978-94-007-3854-6. 

(114)^ Steinberg, C.E.W., Schäfer, H., Beisker, W., Brüggemann, R. (1998). Deriving restoration goals for acidified lakes from taxonomic studies. Restor, Ecol. 6: 327-335. doi:10.1046/j.1526-100X.1998.06403.x. 

(115)^ van Liere, L. & Walsby, A.E. (1982). Interactions of cyanobacteria with light. In Carr, N.G. and Whitton, B.A.. The Biology of the Cyanobacteria. Blackwell Science Publications. pp. 9-45. ISBN 0-520-04717-6. 

(116)^ abcWalter, J. M., Coutinho, F. H., Dutilh, B. E., Swings, J., Thompson, F. L. & Thompson, C. C. (2017). Ecogenomics and taxonomy of Cyanobacteria phylum. Frontiers in Microbiology 8: 2132. doi:10.3389/fmicb.2017.02132. 

(117)^ Weisse, T. (1993). Dynamics of autotrophic picoplankton in marine and freshwater ecosystems. In Jones, J.G.. Advances in Microbial Ecology, Vol. 13. Plenum Press. pp. 327-370. doi:10.1007/978-1-4615-2858-6_8. 

(118)^ Veldhuis, M.J.W., Kraay, G.W., van Bleijswijk, J.D.L. & Baars, M.A. (1997). Seasonal and spatial variability in phytoplankton biomass, productivity and growth in the northwestern Indian ocean: the southwest and northeast monsoon, 1992-1993. Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers 44: 425-449. doi:10.1016/S0967-0637(96)00116-1. 

(119)^ Zwirglmaier, K., Jardillier, L., Ostrowski, M., Mazard, S., Garczarek, L., Vaulot, D., Not, F., Massana, R., Utioa, O. & Scanlan, D. J. (2008). Global phylogeography of marine Synechococcus and Prochlorococcus reveals a distinct partitioning of lineages among oceanic blooms. Environ. Microbiol. 10: 147-161. doi:10.3389/fmicb.2018.01393. 

(120)^ Flombaum, P., Gallegos, J. L., Gordillo, R. A., Rincón, J., Zabala, L. L., Jiao, N., ... & Vera, C. S. (2013). Present and future global distributions of the marine Cyanobacteria Prochlorococcus and Synechococcus. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110: 9824-9829. doi:10.1073/pnas.1307701110. 

(121)^ Callieri, C. (2007). Picophytoplankton in freshwater ecosystems: the importance of small-sized phototrophs. Freshwater Reviews 1: 1-28. doi:10.1608/FRJ-1.1.1. 

(122)^ . .  . 2021925

(123)^ ab; ;  () (1994).  : . . pp. 257. ISBN 4-13-066152-3. NCID BN11097702 

(124)^ Manage, P.M., Kawabata, Z. & Nakano, S. (2001). Dynamics of cyanophage-like particles and algicidal bacteria causing Microcystis aeruginosa mortality. Limnology 2: 73-78. doi:10.1007/s102010170002. 

(125)^ Sukenik, A., Eshkol, R., Livne, A., Hadas, O., Rom, M., Tchernov, D., Vardi, A. & Kaplan, A. (2002). Inhibition of growth and photosynthesis of the dinoflagellate Peridinium gatunensebyMicrocystis sp. (cyanobacteria): a novel allelopathic mechanism. Limnol. Oceanogr. 47: 1656-1663. doi:10.4319/lo.2002.47.6.1656. 

(126)^ Mizuta, S., Imai, H., Chang, K.-H., Doi, H., Nishibe, Y. & Nakano, S. (2010). Grazing on Microcystis (Cyanophyceae) by testate amoebae with special reference to cyanobacterial abundance and physiological state. Limnplogy 12: 205-211. doi:10.1007/s10201-010-0341-1. 

(127)^ Zotina, T., Köster, O. & Jüttner, F. (2003). Photoheterotrophy and lightdependent uptake of organic and organic nitrogenous compounds by Planktothrix rubescens under low irradiance. Freshwater Biology 48: 1859-1872. doi:10.1046/j.1365-2427.2003.01134.x. 

(128)^ abTang, E. P. Y., Tremblay, R. & Vincent, W. F. (1997). Cyanobacterial dominance of polar freshwater ecosystems: are high-latitude mat-formers adapted to low temperature?. J. Phycol. 33: 171-181. doi:10.1111/j.0022-3646.1997.00171.x. 

(129)^ Shapiro, R. S. (2000). A comment on the systematic confusion of thrombolites. Palaios 15 (2): 166-169. doi:10.2307/3515503. 

(130)^ Corsetti, F. A., Awramik, S. M. & Pierce, D. (2003). A complex microbiota from snowball Earth times: microfossils from the Neoproterozoic Kingston Peak Formation, Death Valley, USA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100: 4399-4404. doi:10.1073/pnas.0730560100. 

(131)^ Ward, D. M. & Castenholz, R. W. (2000). Cyanobacteria in geothermal habitats. The Ecology of Cyanobacteria. Springer Netherlands. pp. 37-59. ISBN 0-09-941464-3 

(132)^ Wierzchos, J., Ascaso, C. & McKay, C. P. (2006). Endolithic cyanobacteria in halite rocks from the hyperarid core of the Atacama Desert. Astrobiology 6: 415-422. doi:10.1089/ast.2006.6.415. 

(133)^ 702012165-172ISSN 1880-7593NAID 40019324597 

(134)^ Fulda, S., Mikkat, S., Schroder, W., Hagemann, M. (1999). Isolation of salt-induced periplasmic proteins from Synechocystis sp. strain PCC 6803. Arch. Microbiol. 171: 214-217. doi:10.1007/s002030050702. 

(135)^ abcAdams, D. G. (2000). Symbiotic interactions. In Whitton, B.A. & Potts, M.. Ecology of Cyanobacteria: Their Diversity in Time and Space. Kluwer Academic Publishers. pp. 523-561. ISBN 0-09-941464-3 

(136)^ abcdAdams, D. G., Duggan, P. S. & Jackson, O. (2012). Cyanobacterial symbioses. In Whitton, B.A.. Ecology of Cyanobacteria II: Their Diversity in Space and Time. Springer Science+Business Media B.V.. pp. 593-675. ISBN 978-94-007-3854-6 

(137)^ abcAdams, D. G., Bergman, B., Nierzwicki-Bauer, S. A., Rai, A. N. & Schüßler, A. (2006). Cyanobacterial-plant symbioses. In Dworkin M, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer K-H, Stackebrandt E. The Prokaryotes. A Handbook on the Biology of Bacteria, vol 1, 3rd ed. Symbiotic Associations, Biotechnology, Applied Microbiology. Springer. pp. 331-363. ISBN 978-1-4757-2193-5 

(138)^ abCarpenter, E.J. (2002). Marine cyanobacterial symbioses. Biol. Environ. Proc. R Ir Acad. 102B: 15-18. doi:10.1007/0-306-48005-0_2. 

(139)^ Paerl, H. (1992). Epi- and endobiotic interactions of cyanobacteria. In Reisser, W.. Algae and Symbioses: Plants, Animals, Fungi, Viruses, Interactions Explored. Biopress Limited. pp. 537-565 

(140)^ Decelle, J., Colin, S. & Foster, R. A. (2015). Photosymbiosis in marine planktonic protists. Marine Protists. Springer Japan. pp. 465-500. doi:10.1007/978-4-431-55130-0_19. https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-4-431-55130-0_19 

(141)^ abRikkinen, J. (2002). Cyanolichens: an evolutionary overview. In Rai, A.N., Bergman, B. & Rasmussen, U.. Cyanobacteria in Symbiosis. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. pp. 31-72. ISBN 1-4020-0777-9 

(142)^ Gehrig, H., Schüßler, A. & Kluge, M. (1996). Geosiphon pyriforme, a fungus forming endocytobiosis withNostoc (Cyanobacteria), is an ancestral member of the glomales: evidence by SSU rRNA analysis. Journal of Molecular Evolution 43: 71-81. doi:10.1007/BF02352301. 

(143)^ Mollenhauer, D., Mollenhauer, R. & Kluge, M. (1996). Studies on initiation and development of the partner association in Geosiphon pyriforme (Kütz.) v. Wettstein, a unique endocytobiotic system of a fungus (Glomales) and the cyanobacterium Nostoc punctiforme (Kütz.) Hariot. Protoplasma 193: 3-9. doi:10.1007/BF01276630. 

(144)^ Schüßler, A. & Wolf, E. (2005). Geosiphon pyriformis - a Glomeromycotan soil fungus forming endosymbiosis with Cyanobacteria. In Vitro Culture of Mycorrhizas. Soil Biology, Volume 4, Part V. pp. 271-289. ISBN 3-540-24027-6 

(145)^ Usher, K.M. (2008). The ecology and phylogeny of cyanobacterial symbionts in sponges. Marine Ecology 29: 178-192. doi:10.1111/j.1439-0485.2008.00245.x. 

(146)^ Lindquist, N., Barber, P.H. & Weisz, J.B. (2005). Episymbiotic microbes as food and defence for marine isopods: unique symbioses in a hostile environment. Proc. R Soc. Lond. B 272: 1209-1216. doi:10.1098/rspb.2005.3082. 

(147)^ Münchhoff, J., Hirose, E., Maruyama, T., Sunairi, M., Burns, B.P., & Neilan, B.A. (2007). Host specificity and phylogeography of the prochlorophyte Prochloron sp., an obligate symbiont in didemnid ascidians. Environ. Microbiol. 9: 890-899. doi:10.1111/j.1462-2920.2006.01209.x. 

(148)^ abcFoster, R. A. Carpenter, E. J. & Bergman, B. (2006). Unicellular cyanobionts in open ocean dinoflagellates, radiolarians, and tintinnids: ultrastructural characterization and immuno-localization of phycoerythrin and nitrogenase. Journal of Phycology 42: 453-463. doi:10.1111/j.1529-8817.2006.00206.x. 

(149)^ abcFoster, R. A., Collier, J. L. & Carpenter , E. J. (2006). Reverse transcription PCR amplification of cyanobacterial symbiont 16S rRNA sequences from single non-photosynthetic eukaryotic marine planktonic host cells. Journal of Phycology 42: 243-250. doi:10.1111/j.1529-8817.2006.00185.x. 

(150)^ Lee, J.J. (2006). Algal symbiosis in larger foraminifera. Symbiosis 42: 63-75. 

(151)^ Escalera, L., Reguera, B., Takishita, K., Yoshimatsu, S., Koike, K. & Koike, K. (2011). Cyanobacterial endosymbionts in the benthic dinoflagellate Sinophysis canaliculata (Dinophysiales, Dinophyceae). Protist 162: 304-314. doi:10.1016/j.protis.2010.07.003. 

(152)^ Jyothibabu, R., Madhu, N.V., Maheswaran, P.A., Devi, C.R.A., Balasubramanian, T., Nair, K.K.C. & Achuthankutty, C.T. (2006). Environmentally-related seasonal variation in symbiotic associations of heterotrophic dinoflagellates with cyanobacteria in the western Bay of Bengal. Symbiosis 42: 51-58. http://drs.nio.org/drs/handle/2264/547. 

(153)^ abArchibald, J.M. (2009). The puzzle of plastid evolution. Curr. Biol. 19: R81-88. doi:10.1016/j.cub.2008.11.067. 

(154)^ Paulinella chromatophora 411200827-31doi:10.18980/jjprotozool.41.1_27ISSN 0388-3752NAID 130006070219 

(155)^ Rai, A. N., Söderbäck, E. & Bergman, B. (2000). Cyanobacterium-plant symbioses. New Phytologist 147: 449-481. doi:10.1046/j.1469-8137.2000.00720.x. 

(156)^ abAdams, D. G. & Duggan, P. S. (2008). Cyanobacteria-bryophyte symbioses. J. Exp. Bot. 59: 1047-1058. doi:10.1093/jxb/ern005. 

(157)^ Peters, G.A. (1991). Azolla and other plant-cyanobacteria symbioses - aspects of form and function. Plant Soil 137: 25-36. doi:10.1007/BF02187428. 

(158)^ abPapaefthimiou, D., Van Hove, C., Lejeune, A., Rasmussen, U. & Wilmotte, A. (2008). Diversity and host specificity of genus Azolla cyanobionts. J. Phycol. 44: 60-70. doi:10.1111/j.1529-8817.2007.00448.x. 

(159)^ Costa, J.-L. & Lindblad, P. (2003). Cyanobacteria in symbiosis with cycads. In Rai, A.N., Bergman, B. & Rasmussen, U.. Cyanobacteria in Symbiosis. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. pp. 195-205. ISBN 1-4020-0777-9 

(160)^ Bergman, B. (2002). The Nostoc-Gunnera symbiosis. In Rai, A.N., Bergman, B. & Rasmussen, U.. Cyanobacteria in Symbiosis. Kluwer Academic Publishers. pp. 207-232. ISBN 1-4020-0777-9 

(161)^ Bergman, B. & Osborne, B. (2002). The Gunnera-Nostoc symbiosis. Biol. Environ. Proc. R Ir Acad. 102B: 35-39. https://www.jstor.org/stable/20500139. 

(162)^ Cox, P.A., Banack, S.A. & Murch, S.J. (2003). Biomagnification of cyanobacterial neurotoxins and neurodegenerative disease among the Chamorro people of Guam. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100: 13380-13383. doi:10.1073/pnas.2235808100. 

(163)^ Jahson, S., Rai, A. N. & Bergman, B. (1995). Intracellular cyanobiont Richelia intracellularis: ultrastructure and immuno-localisation of phycoerythrin, nitrogenase, Rubisco and glutamine synthetase. Marine Biology 124: 1-8. doi:10.1007/BF00349140. 

(164)^ Foster, R. A. & Zehr, J. P. (2006). Characterization of diatom-cyanobacteria symbioses on the basis of nifH, hetR and 16S rRNA sequences. Environ. Microbiol. 8: 1913-1925. doi:10.1111/j.1462-2920.2006.01068.x. 

(165)^ Foster, R.A., Kuypers, M.M.M., Vagner, T., Paerl, R.W., Muzat, N. & Zehr, J.P. (2011). Nitrogen fixation and transfer in open ocean diatom-cyanobacterial symbioses. ISME J. 5: 1484-1493. doi:10.1038/ismej.2011.26. 

(166)^ Foster, R.A., Subramaniam, A. & Zehr, J.P. (2009). Distribution and activity of diazotrophs in the Eastern Equatorial Atlantic. Environ. Microbiol. 11: 741-750. doi:10.1111/j.1462-2920.2008.01796.x. 

(167)^ White, A.E., Prahl, F.G., Letelier, R.M. & Popp, B.N. (2007). Summer surface waters in the Gulf of California: prime habitat for biological nitrogen fixation. Glob. Biogeochem. Cycles 21: GB2017. doi:10.1029/2006GB002779. 

(168)^ Hagino, K., Onuma, R., Kawachi, M. & Horiguchi, T. (2013). Discovery of an endosymbiotic nitrogen-fixing cyanobacterium UCYN-A in Braarudosphaera bigelowii (Prymnesiophyceae). PLoS One 8: e81749. doi:10.1371/journal.pone.0081749. 

(169)^ Thompson, A., Carter, B. J., TurkKubo, K., Malfatti, F., Azam, F. & Zehr, J. P. (2014). Genetic diversity of the unicellular nitrogenfixing cyanobacteria UCYNA and its prymnesiophyte host. Environmental Microbiology 16: 3238-3249. doi:10.1111/1462-2920.12490. 

(170)^ Kneip, C., Voß, C., Lockhart, P. J. & Maier, U. G. (2008). The cyanobacterial endosymbiont of the unicellular algae Rhopalodia gibba shows reductive genome evolution. BMC Evol. Biol. 8: 30. doi:10.1111/1462-2920.12490. 

(171)^ Lesser, M. P., Mazel, C. H., Gorbunov, M. Y. & Falkowski, P. G. (2004). Discovery of symbiotic nitrogen-fixing cyanobacteria in corals. Science 305: 997-1000. doi:10.1126/science.1099128. 

(172)^ Lesser, M.P., Falcón, L.I., Rodriguez-Roman, A., Enriquez, S., Hoegh-Guldberg, O. & Iglesias-Prieto, R. (2007). Nitrogen fixation by symbiotic cyanobacteria provides a source of nitrogen for the scleractinian coral Montastraea cavernosa. Mar. Ecol. Prog. Ser. 346: 143-152. doi:10.3354/meps07008. 

(173)^ Snoeijs, P. & Murasi, L.W. (2004). Symbiosis between diatoms and cyanobacterial colonies. Vie Et Milieu Life Environ 54: 163-169. 

(174)^ Fong, P., Smith, T.B. & Wartian, M.J. (2006). Epiphytic cyanobacteria maintain shifts to macroalgal dominance on coral reefs following ENSO disturbance. Ecology 87: 1162-1168. doi:10.1890/0012-9658(2006)87[1162:ECMSTM]2.0.CO;2. 

(175)^ Ohkubo, S., Miyashita, H., Murakami, A., Takeyama, H., Tsuchiya, T. & Mimuro, M. (2006). Molecular detection of epiphytic Acaryochloris spp. on marine macroalgae. Appl. Environ. Microbiol. 72: 7912-7915. doi:10.1128/AEM.01148-06. 

(176)^ Ariosa, Y., Quesada, A., Aburto, J., Carrasco, D., Carreres, R., Leganes, F. & Valiente, E.F. (2004). Epiphytic cyanobacteria on Chara vulgaris are the main contributors to N2 fixation in rice fields. Appl. Environ. Microbiol. 70: 5391-5397. doi:10.1128/AEM.70.9.5391-5397.2004. 

(177)^ Berg, A., Danielsson, Å. & Svensson, B. H. (2013). Transfer of fixed-N from N2-fixing cyanobacteria associated with the moss Sphagnum riparium results in enhanced growth of the moss. Plant and Soil 362: 271-278. doi:10.1007/s11104-012-1278-4. 

(178)^ Solheim, B. & Zielke, M. (2002). Associations between cyanobacteria and mosses. In Rai, A.N., Bergman, B. & Rasmussen, U.. Cyanobacteria in Symbiosis. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. pp. 137-152. ISBN 1-4020-0777-9. 

(179)^ Steinke, T.D., Lubke, R.A. & Ward, C.J. (2003). The distribution of algae epiphytic on pneumatophores of the mangrove, Avicennia marina, at different salinities in the Kosi System. S. Afr. J. Bot. 69: 546-554. doi:10.1016/S0254-6299(15)30293-3. 

(180)^ Hamisi, M.I., Lyimo, T.J., Muruke, M.H.S. & Bergman, B. (2009). Nitrogen fixation by epiphytic and epibenthic diazotrophs associated with seagrass meadows along the Tanzanian coast, Western Indian Ocean. Aquat. Microb. Ecol. 57: 33-42. doi:10.3354/ame01323. 

(181)^ Uku, J., Bjork, M., Bergman, B. & Diez, B. (2007). Characterization and com- parison of prokaryotic epiphytes associated with three East African seagrasses. J. Phycol. 43: 768-779. doi:10.1111/j.1529-8817.2007.00371.x. 

(182)^ Tsavkelova, E.A., Lobakova, E.S., Kolomeitseva, G.L., Cherdyntseva, T.A. & Netrusov, A.I. (2003). Associative cyanobacteria isolated from the roots of epiphytic orchids. Microbiology 72: 92-97. doi:10.1023/A:1022238309083. 

(183)^ Watson, S.B. (2003). Cyanobacterial and eukaryotic algal odour compounds: signals or by-products? A review of their biological activity. Phycologia 42: 332-350. doi:10.2216/i0031-8884-42-4-332.1. 

(184)^  (2012).  (). In  (). . . pp. 243249. ISBN 978-4864690027 

(185)^  (2012).  (). In  (). . . pp. 251255. ISBN 978-4864690027 

(186)^ Codd, G. A., Morrison, L. F. & Metcalf, J. S. (2005). Cyanobacterial toxins: risk management for health protection. Toxicology and Applied Pharmacology 203: 264-272. doi:10.1016/j.taap.2004.02.016. https://doi.org/10.1016/j.taap.2004.02.016. 

(187)^ Jang, M.H., Ha, K., Joo, G.J. & Takamura, N. (2003). Toxin production of cyanobacteria is increased by exposure to zooplankton. Freshwater Biol. 48: 1540-1550. 

(188)^ Wiegand, C. & Pflugmacher, S. (2005). Ecotoxicological effects of selected cyanobacterial secondary metabolites a short review. Toxicology and Applied Pharmacology 203: 201-218. doi:10.1016/j.taap.2004.11.002. https://doi.org/10.1016/j.taap.2004.11.002. 

(189)^ , , , , , 2-II-17 B_<12>7341999282doi:10.20632/vso.73.4_282_2 

(190)^  ID:syu04830460475 

(191)^ . .  . 2021923

(192)^ .  GEX. 2021923

(193)^ abcd (2012). . In  (). . . pp. 657659. ISBN 978-4864690027 

(194)^ Sili, C., Torzillo, G. & Vonshak, A. (2012). Arthrospira (Spirulina). Ecology of Cyanobacteria II. Springer Netherlands. pp. 677-705. ISBN 978-94-007-3854-6 

(195)^  ®.  DIC. 2022115

(196)^  (2012). . In  (). . . pp. 655656. ISBN 978-4864690027 

(197)^  &  (2012).  (). In  (). . . pp. 651654. ISBN 978-4864690027 

(198)^   (2012). . In  (). . . pp. 648650. ISBN 978-4864690027 

(199)^ -5251981455-464doi:10.20710/dojo.52.5_455ISSN 0029-0610NAID 110001750611 

(200)^ Hemscheidt, T., Puglisi, M.P., Larsen, L.K., Patterson, G.M.L., Moore, R.E., Rios, J.L. & Clardy, J. (1994). Structure and biosynthesis of borophycin, a new boeseken complex of boric acid from a marine strain of the blue-green alga Nostoc linckia. J. Org. Chem. 59: 3467-3471. doi:10.1021/jo00091a042. 

(201)^ Jensen, G. S. (2001). Blue-green algae as an immuno-enhancer and biomodulator (PDF). J. Am. Nutraceutical Assoc. 3: 24-30. NAID 10020842775. https://www.ganzheitliche-gesundheit.info/wp-content/uploads/2015/09/studie_jensen1.pdf. 

(202)^ Choi, H., Mascuch, S. J., Villa, F. A., Byrum, T., Teasdale, M. E., Smith, J. E., ... & Gerwick, W. H. (2012). Honaucins AC, potent inhibitors of inflammation and bacterial quorum sensing: synthetic derivatives and structure-activity relationships. Chemistry & Biology 19: 589-598. doi:10.1016/j.chembiol.2012.03.014. 

(203)^ Grewe, C. B. & Pulz, O. (2012). The biotechnology of cyanobacteria. Ecology of Cyanobacteria II. Springer Netherlands. pp. 707-739. ISBN 978-94-007-3854-6 

(204)^ ab, , , , , , , , , , , :552201788-97doi:10.1271/kagakutoseibutsu.55.88ISSN 0453-073XNAID 130006316058 

(205)^ 91620136352ISSN 09193758NAID 110009616015NDLJP:10518477 

(206)^ Lane, J. (2013). Algenol hits 9K gallons/acre mark for algae-to-ethanol process]. Biofuels Digest. http://www.biofuelsdigest.com/bdigest/2013/03/11/algenol-hits-9k-gallonsacre-mark-for-algae-to-ethanol-process/. 

(207)^ Pisciotta, J. M., Zou, Y. & Baskakov, I. V. (2010). Light-dependent electrogenic activity of cyanobacteria. PloS One 5: e10821. doi:10.1371/journal.pone.0010821. 

(208)^ Quintana, N., Van der Kooy, F., Van de Rhee, M. D., Voshol, G. P. & Verpoorte, R. (2011). Renewable energy from Cyanobacteria: energy production optimization by metabolic pathway engineering. Applied Microbiology and Biotechnology 91: 471-490. doi:10.1007/s00253-011-3394-0. 

(209)^ Verseux, C., Baque, M., Lehto, K., de Vera, J. P. P., Rothschild, L. J. & Billi, D. (2016). Sustainable life support on Marsthe potential roles of cyanobacteria. International Journal of Astrobiology 15: 65-92. doi:10.1017/S147355041500021X. 

(210)^ Battistuzzi, F. U. & Hedges, S. B. (2008). A major clade of prokaryotes with ancient adaptations to life on land. Molecular Biology and Evolution 26: 335-343. doi:10.1093/molbev/msn247. 

(211)^ Rinke, C., Schwientek, P., Sczyrba, A., Ivanova, N. N., Anderson, I. J., Cheng, J. F., ... & Dodsworth, J. A. (2013). Insights into the phylogeny and coding potential of microbial dark matter. Nature 499: 431-437. doi:10.1038/nature12352. 

(212)^ abSoo, R. M., Skennerton, C. T., Sekiguchi, Y., Imelfort, M., Paech, S. J., Dennis, P. G., ... & Hugenholtz, P. (2014). An expanded genomic representation of the phylum Cyanobacteria. Genome Biology and Evolution 6: 1031-1045. doi:10.1093/gbe/evu073. 

(213)^ abcdSoo, R. M., Hemp, J., Parks, D. H., Fischer, W. W. & Hugenholtz, P. (2017). On the origins of oxygenic photosynthesis and aerobic respiration in Cyanobacteria. Science 355: 1436-1440. doi:10.1126/science.aal3794. 

(214)^ Carnevali, P. B. M., Schulz, F., Castelle, C. J., Kantor, R. S., Shih, P. M., Sharon, I., ... & Anantharaman, K. (2019). Hydrogen-based metabolism as an ancestral trait in lineages sibling to the Cyanobacteria. Nature Communications 10: 463. doi:10.1038/s41467-018-08246-y. 

(215)^ abShih, P. M., Hemp, J., Ward, L. M., Matzke, N. J. & Fischer, W. W. (2017). Crown group Oxyphotobacteria postdate the rise of oxygen. Geobiology 15: 19-29. doi:10.1111/gbi.12200. 

(216)^ Overmann, Jörg; Garcia-Pichel, Ferran (2013), Rosenberg, Eugene; DeLong, Edward F., eds. (), The Phototrophic Way of Life, Springer, pp. 203257, doi:10.1007/978-3-642-30123-0_51, ISBN 978-3-642-30123-0, https://doi.org/10.1007/978-3-642-30123-0_51 2021104 

(217)^ Shih, Patrick M.; Ward, Lewis M.; Fischer, Woodward W. (2017-10-03). Evolution of the 3-hydroxypropionate bicycle and recent transfer of anoxygenic photosynthesis into the Chloroflexi (). Proceedings of the National Academy of Sciences 114 (40): 1074910754. doi:10.1073/pnas.1710798114. ISSN 0027-8424. PMC 5635909. PMID 28923961. https://www.pnas.org/content/114/40/10749. 

(218)^ Ward, L. M.; Shih, P. M. (2021-01-24) (). Phototrophy and carbon fixation in Chlorobi postdate the rise of oxygen. pp. 2021.01.22.427768. doi:10.1101/2021.01.22.427768. https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.01.22.427768v1. 

(219)^ Ward, Lewis M.; Cardona, Tanai; Holland-Moritz, Hannah (2019). Evolutionary Implications of Anoxygenic Phototrophy in the Bacterial Phylum Candidatus Eremiobacterota (WPS-2). Frontiers in Microbiology 10: 1658. doi:10.3389/fmicb.2019.01658. ISSN 1664-302X. PMC 6664022. PMID 31396180. https://www.frontiersin.org/article/10.3389/fmicb.2019.01658. 

(220)^ abHolland, H. D. (2006). The oxygenation of the atmosphere and oceans. Philosophical Transactions of the Royal Society: Biological Sciences 361: 903-915. doi:10.1098/rstb.2006.1838. 

(221)^ Anbar, Ariel D.; Duan, Yun; Lyons, Timothy W.; Arnold, Gail L.; Kendall, Brian; Creaser, Robert A.; Kaufman, Alan J.; Gordon, Gwyneth W. et al. (2007-09-28). A Whiff of Oxygen Before the Great Oxidation Event?. Science 317 (5846): 19031906. doi:10.1126/science.1140325. https://www.science.org/lookup/doi/10.1126/science.1140325. 

(222)^ Johnson, Aleisha C.; Ostrander, Chadlin M.; Romaniello, Stephen J.; Reinhard, Christopher T.; Greaney, Allison T.; Lyons, Timothy W.; Anbar, Ariel D.. Reconciling evidence of oxidative weathering and atmospheric anoxia on Archean Earth. Science Advances 7 (40): eabj0108. doi:10.1126/sciadv.abj0108. https://www.science.org/doi/10.1126/sciadv.abj0108. 

(223)^ French, Katherine L.; Hallmann, Christian; Hope, Janet M.; Schoon, Petra L.; Zumberge, J. Alex; Hoshino, Yosuke; Peters, Carl A.; George, Simon C. et al. (2015-05-12). Reappraisal of hydrocarbon biomarkers in Archean rocks (). Proceedings of the National Academy of Sciences 112 (19): 59155920. doi:10.1073/pnas.1419563112. ISSN 0027-8424. PMC 4434754. PMID 25918387. https://www.pnas.org/content/112/19/5915. 

(224)^ Welander, Paula V.; Coleman, Maureen L.; Sessions, Alex L.; Summons, Roger E.; Newman, Dianne K. (2010-05-11). Identification of a methylase required for 2-methylhopanoid production and implications for the interpretation of sedimentary hopanes (). Proceedings of the National Academy of Sciences 107 (19): 85378542. doi:10.1073/pnas.0912949107. ISSN 0027-8424. PMC 2889317. PMID 20421508. https://www.pnas.org/content/107/19/8537. 

(225)^ Lepot, K., Benzerara, K., Brown, G. E. & Philippot, P. (2008). Microbially influenced formation of 2,724-million-year-old stromatolites. Nature Geoscience 1: 118-121. doi:10.1038/ngeo107. 

(226)^ Schopf, J. W. (2006). Fossil evidence of Archaean life. Phil. Trans. R. Soc. B 361: 869-885. doi:10.1098/rstb.2006.1834. 

(227)^ Bosak, Tanja; Knoll, Andrew H.; Petroff, Alexander P. (2013-05-30). The Meaning of Stromatolites. Annual Review of Earth and Planetary Sciences 41 (1): 2144. doi:10.1146/annurev-earth-042711-105327. ISSN 0084-6597. https://www.annualreviews.org/doi/10.1146/annurev-earth-042711-105327. 

(228)^ Tomitani, A., Knoll, A. H., Cavanaugh, C. M. & Ohno, T. (2006). The evolutionary diversification of cyanobacteria: molecular-phylogenetic and paleontological perspectives. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103: 5442-5447. doi:10.1073/pnas.0600999103. 

(229)^ Farquhar, J. & Wing, B. A. (2003). Multiple sulfur isotopes and the evolution of the atmosphere. Earth and Planetary Science Letters 213: 1-13. doi:10.1016/S0012-821X(03)00296-6. 

(230)^ Yoon, H. S., Hackett, J. D., Ciniglia, C., Pinto, G. & Bhattacharya, D. (2004). A molecular timeline for the origin of photosynthetic eukaryotes. Molecular Biology and Evolution 21: 809-818. doi:10.1093/molbev/msh075. 

(231)^ Gould, S.B., Waller, R.F. & McFadden, G.I. (2008). Plastid evolution. Annu. Rev. Plant Biol. 59: 491-517. doi:10.1146/annurev.arplant.59.032607.092915. 

(232)^ abcPonce-Toledo, R. I., Deschamps, P., López-García, P., Zivanovic, Y., Benzerara, K. & Moreira, D. (2017). An early-branching freshwater cyanobacterium at the origin of plastids. Current Biology 27: 386-391. doi:10.1016/j.cub.2016.11.056. 

(233)^ Pascher, A. (1931). Systematische Übersicht über die mit Flagellaten in Zusammenhang stehenden Algenreihen und Versuch einer Einreihung dieser Algenstämme in die Stämme des Pflanzenreiches. Beihefte Bot Centralbl. 48: 317-332. 

(234)^ Round, F.E. (1973). The Biology of the Algae. 2nd Edition. 278 

(235)^ . .  . 2021923

(236)^ , , ,  () (2018). .  11. . p. 1584. ISBN 978-4621302767 

(237)^ Pringsheim, E.G. (1949). The relationship between bacteria and Myxophyceae. Bacteriological Reviews 13: 47-98. 

(238)^ Oren, A. (2004). A proposal for further integration of the cyanobacteria under the Bacteriological Code. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 54: 1895-1902. doi:10.1099/ijs.0.03008-0. 

(239)^ Lewin, R. A. (1976). Prochlorophyta as a proposed new division of algae. Nature 261: 697-698. doi:10.1038/261697b0. 

(240)^ Anagnostidis, K. & Komáreek, J. (1990). Modern approach to the classification system of cyanophytes. 1. Introduction. Archiv für Hydrobiologie/Algological Studies 38/39: 291-302. 

(241)^ abcHoffmann, L., Komárek, J. & Kastovský, J. (2005). System of cyanoprokaryotes (cyanobacteria) - state in 2004. Algological Studies 117: 95-115. doi:10.1127/1864-1318/2005/0117-0095. 

(242)^ Schirrmeister, B. E., Antonelli, A., Bagheri, H. C. (2011). The origin of multicellularity in cyanobacteria. BMC Evol. Biol. 11: 45. doi:10.1186/1471-2148-11-45. 

(243)^ Schirrmeister, B. E., Gugger, M. & Donoghue, P. C. (2015). Cyanobacteria and the Great Oxidation Event: evidence from genes and fossils. Palaeontology 58: 769-785. doi:10.1111/pala.12178. 

(244)^ Shih, P. M., Wu, D., Latifi, A., Axen, S. D., Fewer, D. P., Talla, E., ... & Herdman, M. (2013). Improving the coverage of the cyanobacterial phylum using diversity-driven genome sequencing. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110: 1053-1058. doi:10.1073/pnas.1217107110. 

(245)^ Uyeda, J. C., Harmon, L. J. & Blank, C. E. (2016). A comprehensive study of cyanobacterial morphological and ecological evolutionary dynamics through deep geologic time. PloS One 11: e0162539. doi:10.1371/journal.pone.0162539. 

(246)^ abcKomárek, J., Kaštovský, J., Mareš, J. & Johansen, J.R. (2014). Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera) 2014, using a polyphasic approach. Preslia 86: 295-335. 

(247)^ Guiry, M.D. & Guiry, G.M. (2019) AlgaeBase. World-wide electronic publication, Nat. Univ. Ireland, Galway. http://www.algaebase.org; searched on 28 Septmber 2019.

(248)^ abHauer, T. & Komárek, J. (2019) CyanoDB 2.0 - On-line database of cyanobacterial genera. - World-wide electronic publication, Univ. of South Bohemia & Inst. of Botany AS CR, http://www.cyanodb.cz

(249)^ Komárek, J. (2018). Several problems of the polyphasic approach in the modern cyanobacterial system. Hydrobiologia 811: 7-17. doi:10.1007/s10750-017-3379-9. 

(250)^ Coutinho, F., Tschoeke, D. A., Thompson, F. & Thompson, C. (2016). Comparative genomics of Synechococcus and proposal of the new genus Parasynechococcus. PeerJ 4: e1522. doi:10.7717/peerj.1522. 

(251)^  &  ()19771151ISBN 978-4753640515 

(252)^ ab () (1999). .  (3) . . pp. 297. ISBN 978-4785358266 

(253)^ Oren, A. (2011). Cyanobacterial systematics and nomenclature as featured in the international bulletin of bacteriological nomenclature and taxonomy/international journal of systematic bacteriology/international journal of systematic and evolutionary microbiology. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology 61: 10-15. doi:10.1099/ijs.0.018838-0. 

関連項目[編集]

外部リンク[編集]


.  . 2021926

.  . 2021926

.  . 2021926

.  --. 2021926

. (2019628). 2021926

CyanoDB. 2021926 ()

Phylum Cyanobacteria. AlgaeBase. 2021926 ()